室温

1.用过的浓缩管要保持过滤膜湿润，不能干掉。 2.浓缩柱配有2个微量离心管。
3.在操作过程中，一个可用于收集滤出液，而另一个用于回收浓缩后的样本。

一年

1、 高回收率 >90%；
2、 垂直结构的膜减少了浓差极化，加快离心速度，快达 5 分钟；
3、 热密封膜将下游溶出物污染可能性降到最低；
4、 100% 完整性检测确保性能可靠；
5、 透明外壳和体积刻度方便样品察看；
6、 直接吸取样品减少处理步骤；
7、 高浓缩倍数：高达80–100 倍

1.离心机；可容纳1.5ml微量离心管的固定角度转子离心机。
2.移液器
3.冰箱

1.纯水

1.离心管
2.吸头

1.不同的蛋白浓缩的速度不同，有的需要长时间离心，有的则很快就好。和蛋白样品纯度，所用buffer类型，蛋白的浓度有关系。离心时要先短些时间，观察一下浓缩速度；
2.如果需要多次重复使用，离心速度不要太高；
3.重复使用时要仔细检查管壁上有没有裂纹；
4.浓缩柱浓缩蛋白会有蛋白损失，样品体积大就分批离心，尽可能不要离心时间太长
5.样品里的杂质如果可能尽量在离心前去除一些。
6.分子量小于5kD的溶质可能只有部分被截留。2kD的样品截留率大约只有40%。过滤膜的截留率取决于溶质的分子大小和形状。目的蛋白小于5kD的样品不要使用浓缩柱浓缩。
7.浓缩液的样本回收率低可能是由于吸附损失、过度浓缩，或样本穿过滤膜而造成的。
8.吸附损失取决于溶质浓度、疏水性、与过滤浓缩管表面接触的温度和时间、样本成分及pH。为了最大限度降低损失，离心后请立即回收浓缩后的样本。
9.如果样本的起始浓度很高，请监控离心过程，以免样本过度浓缩。过度浓缩会导致沉淀，这也可能带来样本损失。
10.样本有可能穿过滤膜，务必将每次的滤过液一直保留到浓缩的样品分析测试完成。
11.样品蛋白最低起始浓度为25ug/ml。
12.加蛋白液或Buffer到浓缩管时，可以用蓝枪头；但从浓缩管底吸取浓缩好的目的蛋白时，必须用黄枪头；用枪头伸入浓缩管中时，必须防止碰到滤膜，以免戳破滤膜。

产品规格参数：
初始样本的最大体积：500ul
最终浓缩液的典型体积：15-20ul
建议的相对离心力：10,000 x g（浓缩离心）
1,000 x g（反转离心）
最大的相对离心力： 12,000 x g
有效膜面积：1 cm2
截留体积：< 5ul

尺寸：
过滤管和管子
长度（浓缩模式；浓缩管插在管中）：49.9 mm
长度（反转离心；浓缩管倒着插在管中）：47.4 mm
管（已盖上盖子）
直径：10.8 mm；长度：42.1 mm
过滤浓缩管
直径：9.4 mm；长度：29.5 mm

浓缩管材料：
过滤浓缩管：苯乙烯共聚物/丁二烯
滤膜：低蛋白结合再生纤维素膜
收集管：聚丙烯

清洗浓缩柱：
1. 用缓冲液或纯水进行预清洗。也可先用0.1 M NaOH清洗，再用缓冲液或纯水进行二次清洗。
2. 离心管中的过滤膜一旦润湿后应避免变干。如果在预清洗后不是立即使用，则让液体保留在滤膜上，直到使用。

浓缩使用方法：

操作步骤：
1. 将内管插入所提供的一个微量离心管中。
2. 向内管中加入不超过500 ul的样本，并盖上盖子。
3. 将盖好盖子的浓缩管放入离心转子中，让盖子的连接带朝着转子的中央；用一个类似的离心管平衡。
4. 以2000-10000 x g离心约10-30分钟。
5. 离心结束后将整个浓缩管从离心机中取出，取出内管。
6. 为了回收浓缩后的溶质，将内管倒过来插在另一个干净的微量离心管中。放在离心机中，让打开的盖子朝着转子的中央；用一个类似的离心管进行平衡。以1,000 x g离心2分钟，使浓缩后的样本从浓缩内管转移到收集管中。滤液可以保存在收集管中。

脱盐使用方法：

操作步骤：
1. 把样品置于过滤装置的储液管中；
2. 如果样品体积小于过滤装置的最大体积，则可以把它稀释到最大体积后再离心，这有助于更有效地除去盐分；
3. 在特定的离心力下和推荐的时间进行离心；
4. 将滤过液从滤管中取出，放置一旁；
5. 加入水或缓冲液使样品体积达到0.5ml；
6. 再次离心；
7. 取出滤过液，放置一旁；
8. 回收浓缩的已脱盐样品。

清洗和保存：
1. 使用后用水冲洗干净；
2. 内管加入超纯水500µl，5000g离心5分钟；
3. 净内管中的水，加入500µl 0.1M NaOH，5000g离心20分钟；
4. 用0.1M NaOH 浸泡24小时；
5. 用水冲洗干净；
6. 用无菌水浸泡2-8℃保存。
7. 外管用自来水洗净后，用超纯水冲洗干净，晾干。

1.蛋白浓缩柱会损失蛋白吗？
分子量小于3000 Da的蛋白质或多肽样品会穿透过滤膜，不适合用本浓缩柱进行浓缩。3000 -6000Da的蛋白质会有少量损失。6000Da以上的蛋白质损失很小。
2.膜会因为离心时间过长而变干么？
不会，因为浓缩柱有死体积，总会有溶液残留在滤管中。死体积大约10-20ul。
3.可以重复使用浓缩柱么？
可以重复使用。如果使用、清洗、保存得当，可以反复使用多次。但是多次重复使用后过滤膜有破损风险，注意使用过程中尽量避免尖锐物品戳到膜。离心力不要过大。
4.蛋白在浓缩时出现了沉淀，如何改进？
蛋白如果浓缩过快或者过度浓缩都有可能引起蛋白沉淀。建议蛋白浓缩后的最终浓度不超过20mg/ml。对于对浓缩速度敏感而容易沉淀的蛋白，建议的改进方法是：1）离心力降低30%-50%