转染试剂

BB-46012
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  • 0.5ml
  • 1ml
价格
  • ¥800元
  • ¥1400元
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产品概述 product description

贝博® BBcellProbe® 脂质体转染试剂是一种新型的阳离子脂质体转染试剂,适用于把质粒、siRNA或其他形式的核酸包括DNA、RNA、寡核苷酸以及核酸蛋白复合物或带负电荷的蛋白转染到真核细胞中。 贝博® 脂质体转染试剂对于常见的哺乳动物细胞具有较高的转染效率,较好的重复性,且操作简以及单细胞毒性较小,可用于贴壁细胞和悬浮细胞。在使用上与Lipo2000 Reagent极为相似。该转染试剂转染细胞时,基本不受细胞培养液中的血清和抗生素的影响,即可以在血清和抗生素存在的情况下进行细胞转染。但为了取得最佳的转染效果,推荐转染时使用不含抗生素的含血清的细胞培养液。 外源基因导入真核细胞的方法有很多种,如磷酸钙转染法、DEAE-葡聚糖转染法、脂质体法、电穿孔法、显微注射法等。 本试剂为脂质体转染试剂,需要非脂质体转染试剂请选择贝博货号为BB-4601的产品。 贝博® BBcellProbe® 可以提供细胞凋亡、增殖、毒性、活性氧、细胞代谢、氧化应激、细胞膜流动性、膜通透性转换孔、细胞耗氧率、细胞内pH、细胞粘附、细胞自噬等数百种检测试剂盒产品。

保存温度
-20℃保存
注意事项
注意微生物污染
有效期
一年
仪器准备
1. 离心机
2. 移液器3. 冰箱
试剂准备
1. PBS
2. 胰蛋白酶消化液
3. 完全培养液和不完全培养液
使用注意事项
1. 注意无菌操作,尽量避免污染。
2. 使用高纯度DNA或RNA有助于获得较高的转染效率。DNA不应含有蛋白和酚。
3. 为了取得较高的转染效率,推荐使用在50代以内的细胞进行转染,转染前细胞必须处于良好的生长状态。
4. 高纯度的质粒是获得高转染效率的必要条件,要确保OD260/OD280≥1.8.
5. 该转染试剂不应涡旋或离心,宜缓慢晃动混匀。
6. 在体外细胞转染实验中,可通过预实验在转染试剂:DNA(ug)=2:1~6:1之间选择最佳比例。
7. 影响转染效率的因素很多,如细胞类型、细胞状态及密度、DNA/siRNA转染量、转染试剂与DNA/siRNA比例等,应再具体实验中优化最佳的转染条件。
使用方法

DNA转染(以12孔板为例):
1. 在转染前18~24h用胰蛋白酶消化培养细胞,取适量对数期细胞转移至新的12孔板中,并将细胞培养板置于37℃ 5% CO2培养箱培养,待细胞密度大70~90%满时即可进行转染。后续操作步骤均按12孔板计算,如果转染器皿不同,请按比例自行调节用量。
2. 在加入待转染的DNA之前2~4h,加入1ml不含抗生素的完全培养液,置于37℃ 5% CO2培养箱培养。 也可使用含有血清并含有抗生素的新鲜培养液,但抗生素使某些细胞转染后出现一定的细胞毒性。
3. 配制染色工作液:取2个无菌离心管,分别加入50ul不含抗生素和血清的培养液,取其中一离心管加入1.6~3ugDNA,轻轻混匀;取另一离心管加入4ul脂质体转染试剂,轻轻混匀。室温静置5min,将含有DNA的培养液用微量移液器轻轻加入含有转染试剂的培养液中,轻轻吹打混匀,室温静置20min。
4. 将上述转染工作液逐滴滴入对应细胞培养液中,轻轻混匀后置于37℃ 5% CO2培养箱培养中培养。
5. 培养4~6h后,更换为含有血清的完全培养液。对于Hela细胞,推荐在转染4h更换培养液;对于NIH3T3、 CHO、 HEK293T和 HEK293FT 细胞,推荐在转染6h更换培养液。
继续培养24~48h后,观察或收集细胞或加入适当的筛选药物如G418等进行稳定细胞株的筛选。

(二)siRNA转染(以12孔板为例):
1. 在转染前18~24h用胰蛋白酶消化培养细胞,取适量对数期细胞转移至新的12孔板中,并将细胞培养板置于37℃ 5% CO2培养箱培养,待细胞密度大50~80%满时即可进行转染。后续操作步骤均按12孔板计算,如果转染器皿不同,请按比例自行调节用量。
2. 在加入待转染的siRNA之前2~4h,加入1ml不含抗生素的完全培养液,置于37℃ 5% CO2培养箱培养。 也可使用含有血清并含有抗生素的新鲜培养液,但抗生素使某些细胞转染后出现一定的细胞毒性。
3. 配制染色工作液:取2个无菌离心管,分别加入50ul不含抗生素和血清的培养液,取其中一离心管加入40pmol siRNA,轻轻混匀;取另一离心管加入2ul转染试剂,轻轻混匀。室温静置5min,将含有siRNA的培养液用微量移液器轻轻加入含有转染试剂的培养液中,轻轻吹打混匀,室温静置20min。
4. 将上述转染工作液逐滴滴入对应细胞培养液中,轻轻混匀后置于37℃ 5% CO2培养箱培养中培养。
5. 培养4~6h后,更换为含有血清的完全培养液。对于Hela细胞,推荐在转染4h更换培养液;对于NIH3T3、 CHO、 HEK293T和 HEK293FT 细胞,推荐在转染6h更换培养液。
6. 继续培养24~48h后,观察或收集细胞。

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